電気通信大学 瀧研究室

実験室の紹介と研究業績

有機化学実験室(通称:赤の部屋)

ロータリーエバポレーター なすフラスコ内のボトルシップ 多サンプル溶媒蒸発装置

数百年の歴史を持つ有機化学的手法を駆使して、新規化合物を合成し、生物学と融合させます。写真はロータリーエバポレーター。なすフラスコを取り付けて、目的化合物が溶けている溶媒のみを取り除く、古くから使われてきた蒸発装置です。複数の試料中に含まれる溶媒を蒸発により取り除く装置もあります。

生物学実験室(青の部屋)

遺伝子ラボ風景
Dウェルマキシマイザーと微生物培養
多目的遠心機

バイオセーフティーレベルP1の登録をしている生物学実験室では、DNA,RNA,蛋白質といった、生体有機高分子を工学的に改変する実験を主に行います。試験管内だけでなく、生きた生物(微生物・動物細胞・ファージウィルス、その他)を使い、これを行うこともあります。
上の写真では、パン酵母を培養するための栄養分(培地)が入ったボトルが並んでおります。ディープウェルマキシマイザーを使うことによって約200種類の微生物サンプルを同時培養できるほか、真ん中の写真のように寒天培地でインキュベートする裏ワザもあります。寒天培地上に生育した微生物を使って生体高分子を合成させるため、液体培地を使って大量培養することも多いです。集めた菌体を液体から分離するため、遠心機を使います(下の写真)。この多目的遠心機は、1リットルの液体を遠心するときにも、数マイクロリットルの微量液体を遠心するときにも使える優れものです。

光・物性測定室(緑の部屋)

微量UV測定 プレートリーダー マイナス80℃冷凍庫

物質の吸収・蛍光スペクトルをはじめとする、分光学的測定等を行う部屋です。左の写真は、0.5μLの極微量から1 mL程度の容量まで、DNAや蛋白質・自作有機化合物まで何でも測れる吸光度測定器。真ん中の写真にある、96個の試料を一度に分析してしまうプレートリーダーも便利です。超低温冷凍庫(マイナス80℃)では、様々な生物試料が眠っています(写真右)。
ラボメンバーがほっと一息つけるコーナーもあります。

研究業績

I 著書,編書,翻訳書

  1. K. Yahiro, T. Yamakoshi, J. Yang, S. Watanabe, and M. Taki, Theoretical/Experimental Structural Analysis of Protein-Ligand Interaction between GST and its Fluorogenic Binder Created by the 10BASEd-T, Peptide Science 2015, p.89-90 (2016).
  2. Y. Arai, and M. Taki, Synthesis of Multicyclic Library for Finding Strong Target-Specific Binders, Peptide Science 2014, p.267-268 (2015).
  3. H. Inoue, R. Asano, and M. Taki, Artificial Macrocycle as a Functional-Equivalent of Catalytic Antibody, Peptide Science 2014, p.269-270(2015).
  4. K. Fukunaga, T. Hatanaka, Y. Ito, and M. Taki, An Artificial Molecule-Peptide Hybrid Discovered via the 10BASEd-T Binds to the Substrate-Binding Site of Glutathione S-Transferase, Peptide Science 2013, p.91-92 (2014).
  5. Y. Tokunaga, K. Fukunaga, T. Hatanaka, Y. Ito, and M. Taki, Selection of Streptavidin-Binding Artificial Peptide Posessing Salicylic Acid Moiety via the 10BASEd-T on the Bacteriophage T7, Peptide Science 2013, p.173-174 (2014).
  6. K. Fukunaga, and M. Taki, Construction of a Peptide Expression Vector Library for Phenotypic Screening of Bioactive Peptides in Yeast, Peptide Science 2013, p.421-422 (2014).
  7. 瀧 真清, 第2章「創薬システムエンジニアリング:NEXT-A法および10BASEd-T法の開発」, 総合コミュニケーション科学シリーズ ユニーク&エキサイティング サイエンス2(近代科学社), p.39-67 (2013).
  8. Y. Tokuda, H. Kimura, H. Saiki, M. Taki, and H. Saji, Synthesis of N-terminal specific PET-probe labeling of peptides via the NEXT-A reaction, Peptide Science 2012, p.41-42 (2013).
  9. T. Hamamoto, M. Sisido, T. Ohtsuki, and M. Taki*, Synthesis of cyclic peptides using the NEXT-A Reaction, Peptide Science 2010, p.113 (2011).
  10. 瀧 真清*、宍戸 昌彦、第4章「L/F-転移酵素による機能性非天然アミノ酸の蛋白質N末端への導入」酵素利用技術大系(NTS社)p.497-504 (2010).
  11. M. Taki*, K. Ebisu, H. Kuroiwa, and M. Sisido*, N-Terminal Specific Point-Immobilization and Fluorescence Labeling of Peptide/Protein by the One-Pot NEXT-A Reaction, Peptide Science 2009, p.83-84 (2010).
  12. 瀧 真清*、宍戸 昌彦、第2章「タンパク質工学の基礎」バイオプロセスハンドブック(NTS社)p.27-58 (2007).
  13. M. Taki*, Y. Suzuki, Y. Yamazaki, and M. Sisido*, Position-specific Incorporation of Blue-laser Excitable Fluorescent Amino Acids into Peptides and Proteins, Peptide Science, p.12 (2006).
  14. Y. Nakamura, M. Taki, S. Tobita, H. Shizuka, A. Mori, and J. Nishimura, Spectroscopic properties of some [60]fullerene-o-quinodimethane monoadducts and bisadducts, Fullerenes-Vol. 4 (Recent Advances in the Chemistry and Physics of Fullerenes and Related Materials), ed. by K. M. Kadish and R. S. Ruoff, Electrochem. Soc. Inc., Pennington, p 37-44 (1997).

Ⅱ 学術雑誌 (査読有)

  1. M. Taki*, H. Inoue, K. Mochizuki, J. Yang, Y. Ito, Selection of color-changing and intensity-increasing fluorogenic probe as protein-specific indicator obtained via the 10BASEd-T, Anal. Chem., 88, 1096-1099 (2016).
  2. M. Taki*, and H. Kuroiwa, Unexpectedly fast transfer of positron-emittable artificial substrate into N-terminus of peptide/protein mediated by wild-type L/F-tRNA-protein transferase, Amino Acids,47,1279-1282 (2015).
  3. K. Fukunaga, T. Hatanaka, Y. Ito, M. Minami, and M. Taki*, Construction of a crown ether-like supramolecular library by conjugation of genetically-encoded peptide linkers displayed on bacteriophage T7, Chem. Commun., 50, 3921-3923 (2014), inside cover article.
  4. Y. Tokunaga, Y. Azetsu, K. Fukunaga, T. Hatanaka, Y. Ito and M. Taki*, Pharmacophore generation from a drug-like core molecule surrounded by library peptide via the 10BASEd-T on bacteriophage T7, Molecules, 19, 2481-2496 (2014).
  5. K. Fukunaga, T. Hatanaka, Y. Ito, and M. Taki*, Gp10 based-thioetherification (10BASE(d)-T) on a displaying library peptide of bacteriophage T7, Molecular BioSystems, 9, 2988-2991 (2013).
  6. J. Kawaguchi, K. Maejima, H. Kuroiwa, and M. Taki*, Kinetic analysis of the leucyl/phenylalanyl-tRNA-protein transferase with acceptor peptides possessing different N-terminal penultimate residues, FEBS Open Bio, 3, 252-255 (2013).
  7. K. Fukunaga* and M. Taki*, Practical Tips for Construction of Custom Peptide Libraries and Affinity Selection by Using Commercially Available Phage Display Cloning Systems, J. Nucl. Acids, Volume 2012, Article ID 295719, doi:10.1155/2012/295719 (2012).
  8. T. Hamamoto, M. Sisido, T. Ohtsuki, and M. Taki*, Synthesis of cyclic peptide/ protein using the NEXT-A Reaction followed by cyclization, Chem. Commun., 47, 9116-9118 (2011).
  9. K. Kitamura*, M. Taki, N. Tanaka, I. Yamashita, Fission yeast Ubr1 ubiquitin ligase influences the oxidative stress response via degradation of active Pap1 bZIP transcription factor in the nucleus, Mol. Microbiol., 80, 839-755 (2011).
  10. M. Taki*, Y. Yamazaki, Y. Suzuki, M. Sisido*, Introduction of a highly photodurable and common-laser excitable fluorescent amino acid into a peptide as a FRET acceptor for protease cleavage detection, Chem. Lett., 39, 818-819 (2010).
  11. K. Ebisu, H. Tateno, H. Kuroiwa, K. Kawakami, M. Ikeuchi, J. Hirabayashi, M. Sisido*, M. Taki*, N-terminal specific point-immobilization of active proteins via the one-pot NEXT-A method, ChemBioChem, 10, 2460-2464 (2009).
  12. M. Taki*, H. Kuroiwa, M. Sisido*, Chemoenzymatic transfer of fluorescent non-natural amino acids to the N terminus of a protein/peptide, ChemBioChem, 9, 719-722 (2008).
  13. M. Taki*, and M. Sisido*, L/F-tRNA-protein transferase-mediated aminoacyl transfer of a nonnatural amino acid to the N-terminus of peptides and proteins and subsequent Functionalization by bioorthogonal reactions, Biopolymers: Peptide Science, 88, 263-271 (2007).
  14. M. Taki*, A. Kuno, S. Matoba, Y. Kobayashi, J. Futami, H. Murakami, H. Suga, K. Taira, T. Hasegawa, and M. Sisido*, Leucyl/Phenylalanyl-tRNA-protein transferase-mediated chemoenzymatic coupling of N-terminal Arg/Lys units in post-translationally processed proteins with nonnatural amino acids, ChemBioChem, 7, 1676-1679 (2006).
  15. M. Taki, Y. Tokuda, T. Ohtsuki, and M. Sisido*, Design of carrier tRNAs and selection of four-base codons for efficient incorporation of various nonnatural amino acids into proteins in Spodoptera frugiperda 21 (Sf21) insect cell-Free translation system, J. Biosci. Bioeng., 102, 511-517 (2006).
  16. M. Taki, J. Matsushita, M. Sisido*, Expanding the Genetic Code in a Mammalian Cell Line by the Introduction of Four-Base Codon/Anticodon Pairs, ChemBioChem, 7, 425-428 (2006).
  17. H. Hamada, N. Kameshima, A. Szymanska, K. Wegner, L. Lankiewicz, H. Shinohara, M. Taki, M. Sisido*, Position-specific incorporation of a highly photodurable and blue-laser excitable fluorescent amino acid into proteins for fluorescence sensing, Bioorganic & Medicinal Chemistry, 13(10), 3379-3384 (2005).
  18. M. Taki, Y. Kato, M. Miyagishi, Y. Takagi, K. Taira*, Small interfering RNA (siRNA) expression in cells based on an efficiently constructed dumbbell-shaped DNA, Angew. Chem. Int. Ed. Engl., 43, 3160-3163 (2004).
  19. M. Taki, M. Shiota, and K. Taira*, Enzymatic N- and C- terminal fluorescein labelling of a protein in vitro can support the native activity of the modified protein, Protein Eng., 17, 119-126 (2004).
  20. M. Taki, T. Hohsaka, H. Murakami, K. Taira, and M. Sisido*, Position-Specific Incorporation of a Fluorophore-Quencher Pair into a Single Streptavidin through Orthogonal Four-Base Codon/Anticodon Pairs, J. Am. Chem. Soc., 124, 14586-14590 (2002).
  21. M. Taki, and K. Taira*, Synthesis of novel Luminescent Substrates and their incorporation into a protein only at a terminal site via a transglutaminase-catalyzed enzymatic reaction, Chem. Lett., 33, 234-235 (2004).
  22. Y. Tanaka, Y. Kasai, S. Mochizuki, A. Wakisaka, E. H. Morita, C. Kojima, A. Toyozawa, Y. Kondo, M. Taki, Y. Takagi, A. Inoue, K. Yamasaki, K. Taira*, Nature of the Chemical Bond Formed with the Structural Metal Ion at the A9/G10.1 Motif Derived from Hammerhead Ribozymes, J. Am. Chem. Soc., 126(3), 744-752 (2004).
  23. Y. Ikeda, S. Kawahara, M. Taki, A. Kuno, T. Hasegawa, K. Taira*, Synthesis of a novel histidine analog and its efficient incorporation into a protein in vivo, Protein Engineering, 16(9), 699-706 (2003).
  24. M. Taki, T. Hohsaka, H. Murakami, K. Taira*, and M. Sisido, Highly sensitive fluorescent nonnatural amino acids that can be incorporated into specific positions of streptavidin, Phosphorous, Sulfur and Silicon, 177, 1929-1930 (2002).
  25. M. Taki, S. Y. Sawata, and K. Taira*, Specific N-terminal biotinylation of a protein in vitro by a chemically modified tRNAfmet can support the native activity of the translated protein, J. Biosci. Bioeng., 92, 149-153 (2001).
  26. M. Taki, T. Hohsaka, H. Murakami, K. Taira, and M. Sisido*, A non-natural amino acid for efficient incorporation into proteins as a sensitive fluorescent probe, FEBS Lett., 507, 35-38 (2001).
  27. M. Taki, H. Murakami, M. Sisido*, A chiral Eu3+-thienoyltrifluoroacetone complex on an avidin tetramer:Luminescence and CD studies on the supramolecular protein-metal chelate complex, Chem. Comm., 1199 (2000).
  28. Y. Nakamura, M. Taki, A. Asami, S. Inokuma, K. Hiratani, K. Taguchi, M. Higuchi, J. Nishimura*, Langmuir Films of Amphiphilic [60]Fullerene Derivatives, Bulletin of the Chemical Society of Japan, 73(7), 1615-1619 (2000).
  29. Y. Nakamura, M. Taki, S. Tobita, H. Yokoi, K. Ishiguro, Y. Sawaki, J. Nishimura*, Photophysical properties of various regioisomers of [60]fullerene-o-quinodimethane bis-adducts, Journal of the Chemical Society, Perkin Transactions 2: Physical Organic Chemistry, (1), 127-130 (1999).
  30. M. Taki, Y. Nakamura, H. Uehara, M. Sato, and J. Nishimura*, [60]Fullerene (A1,D1)-Bisadducts: CD Spectra of Enantiomers and Diastereospecific Synthesis, Enantiomer, 3, 231-239 (1998).
  31. M. Taki, S. Takigami, Y. Watanabe, Y. Nakamura, and J. Nishimura*, Synthesis of Polyesters Containing [60]Fullerene Moiety in the Main Chain by Mild Surface Condensation Method, Polym. J., 29, 1020-1022 (1997).
  32. M. Taki, S. Sugita, Y. Nakamura, E. Kasashima, E. Yashima, Y. Okamoto, and J. Nishimura*, Selective Functionalization on [60]Fullerene Governed by Tether Length, J. Am. Chem. Soc., 109, 926-932 (1997).
  33. Y. Nakamura, M. Taki, J. Nishimura*, Nomenclature of [60]fullerene derivatives by edge labeling, Chem. Lett., (8), 703-4 (1995).
  34. M. Igarashi, M. Fukuda, M. Taki, T. Tago, T. Minowa, Y. Okada, J. Nishimura*, Photoreduction of water by the system of C60-platinum-methylviologen, Fullerene Science and Technology, 3(1), 37-43 (1995).

Ⅲ 国際会議プロシーディングス等 (審査無)

  1. M. Taki, H. Kuroiwa, M. Sisido, The NEXT-A (N-terminal extension with transferase and ARS) reaction, Nucleic Acids Symp. Ser., 53(1), 37-38 (2009).
  2. Y. Tokuda, M. Taki, and M. Sisido, Efficient Incorporation of a Nonnatural Amino Acid into a Protein in an Insect Cell-free Translation System, Nucleic Acids Symp. Ser., 48, 161-162 (2006).
  3. H. Hamada, R. Abe, M. Taki, H. Shinohara, T. Hohsaka, M. Sisido, Synthesis and antigen-binding properties of fluorescent labeled camel antibody, Proc. Electrochem. Soc., 004-08(Chemical Sensors VI), 431-435 (2004).
  4. H. Hamada, H. Shinohara, N. Kameshima, M. Taki, A. Syzmanska, T. Hohsaka, M. Sisido, Creation of artificial fluorescence protein in which a novel fluorescent nonnatural amino acid is site-specifically incorporated for new biosensing, Chemical Sensors, 21(Suppl. A), 184-186 (2005).
  5. M. Taki, Y. Kato, M. Miyagishi, Y. Takagi, M. Sano, K. Taira, A direct and efficient synthesis method for dumbbell-shaped linear DNA using PCR in vitro, Nucleic Acids Res. Supl., 3, 191-192 (2003).
  6. T. Ichikawa, A. Kuno, M. Taki, T. Hohsaka, M. Sisido, S. Kaneko, K. Taira, H. Kobayashi, and T. Hasegawa, Site-directed incorporation of non-natural amino acid into Streptomyces xylanase, Nucleic Acids Res. Supl., 4, 161 - 162(2004).
  7. A. Kuno, M. Taki, K. Taira, T. Hasegawa, Leucyl/Phenylalanyl (L/F)-tRNA-protein transferase-mediated N-terminal specific labelling of a protein in vitro, Nucleic Acids Res. Supl., 3, 259-260 (2003).
  8. M. Taki, T. Hohsaka, H. Murakami, A. Kuno, T. Hasegawa, K. Taira, M. Sisido, A novel fluorescent nonnatural amino acid that can be incorporated into a specific position of streptavidin, Nucleic Acids Res. Supl., 2, 203-204 (2002).
  9. M. Taki, T. Hohsaka, M. Sisido, Site-specific cleavage of a protein via introducing a hydroxy acid derivative in the main chain by using four-base codon/anticodon pairs, Nucleic Acids Res. Supl., 1, 227-228 (2001).
  10. M. Taki, S. Y. Sawata K. Taira, A novel immobilization method of an active protein via in vitro N-terminal specific incorporation system of nonnatural amino acids, Nucleic Acids Res. Supl., 1, 197-198 (2001).

Ⅳ 解説・レビュー論文

  1. 瀧 真清、L/F-転移酵素を用いた蛋白質N末端への機能性非天然アミノ酸導入、生体機能関連化学部会Newsletter, 23, 3-6 (2008).
  2. 瀧 真清、カリフォルニア工科大学における研究教育、Peptide Newsletter Japan, 67(1), 11-13 (2008).
  3. 瀧 真清、気になった論文, 生命化学研究レター, 23(2), 22-25 (2007).
  4. 宍戸 昌彦, 瀧 真清、大槻高史、芳坂貴弘、非天然アミノ酸の導入による蛋白質の蛍光ラベル法とその応用, 蛋白質核酸酵素, 51(5), 399-407 (2006).
  5. 瀧 真清、宍戸 昌彦, 活性蛋白質の蛍光標識技術, 化学, 59, 72-73 (2004).
  6. 中村洋介、瀧 真清、西村 淳、[60]フラーレンへのオルトキノジメタン及びその類縁体の付加反応と生成物の性質、季刊フラーレン5, 133-143 (1997).
  7. 中村洋介、瀧 真清、美濃和寿幸、西村 淳、フラーレンの化学の最近の進歩 その1 -[60]フラーレンへのオルトキノジメタンおよびその類縁体の付加反応・生成物の物性、有機合成化学協会誌54, 574-579 (1996).

Ⅴ 公募型シンポジウムにおいて採択された英語口頭発表:

  1. K. Mochizuki, and M. Taki*, Cryptand library construction via the 10BASEd-T for specific binding toward a cancer-related protein, PACIFICHEM2015, 2015年12月17日.
  2. M. Taki*, H. Inoue, K. Mochizuki,Turn-on and color-changeable fluorogenic sensor created by the 10BASEd-T, The 52nd Japanese Peptide Symposium, 2015年11月18日.
  3. M. Taki*, T. Hamamoto, and M. Sisido, Synthesis of cyclic peptides/proteinsusing the NEXT-A/Cyclization reaction, 4th European Conference on Chemistry for Life Sciences (4ECCLS), ブダペスト市(ハンガリー),2011年9月1日.
  4. M. Taki*, T. Hamamoto, and M. Sisido, Synthesis of cyclic peptides using the NEXT-A reaction, PACIFICHEM2010, 2010年12月17日.
  5. H. Kuroiwa, M. Sisido, M. Taki*, N-terminal specific 18F-labeling of peptides and proteins, PACIFICHEM2010, 2010年12月16日.
  6. M. Taki*, K. Ebisu, M. Sisido, N-TERMINAL SPECIFIC POINT-IMMOBILIZATION OF PEPTIDE/PROTEIN BY THE ONE-POT NEXT-A REACTION、International Conference of 46th Japanese Peptide Symposium and 5th Peptide Engineering Meeting、小倉、2009年11月5日.
  7. M. Taki*, H. Kuroiwa, and M. Sisido、The NEXT-A reaction、第6回国際核酸化学シンポジウム、高山、2009年9月29日.
  8. M. Taki*, K. Ebisu, and M. Sisido、Tag-Free N-Terminal Specific Immobilization of Lectin via the NEXT-A Reaction for Sugar Detection, EuroAnalysis2009, インスブルック市(オーストリア), 2009年9月7日.
  9. M. Taki*, Y. Yamazaki, M. Sisido, Position-specific incorporation of blue-laser excitable fluorescent amino acids into peptides , InternationalConference of 43rd Japanese Peptide Symposium and 4th Peptide Engineering Meeting, 2006年11月06日, 横浜.

Ⅵ 招待講演:

  1. 瀧 真清, 進化分子工学(10BASEd-T法)による人工抗体代替物の創成, 第11回理研「バイオものづくり」シンポジウム, 和光市, 2016年3月4日.
  2. 瀧 真清, 人工分子の進化によるものづくり(創薬システム工学を中心に), 第101回 複合材料懇話会, 桐生市, 2015年9月4日.
  3. 瀧 真清, 10BASEd-T法による人工分子コアの進化, 第47回若手ペプチド夏の勉強会, 塩尻市, 2015年8月11日.
  4. M.taki, Construction of peptide/protein-hybrid molecules via the NEXT-A and the 10BASEd-T reaction for PET imaging, The 9th ICME International Conference on Complex Medical Engineering (CME 2015), 岡山県、2015年6月20日
  5. M.Taki, Artificial Molecule Evolution via the 10BASEd-T, IMS Asian International Symposium (Supramolecular Dynamics at the Interface of Chemistry and Biology) , 岡崎市(愛知県)、2015年6月12日
  6. M. Taki、Drug-discovery systems engineering: construction of peptide/protein hybrid molecules via the NEXT-A and/or the 10BASEd-T reaction、BIT's 7th annual congress of industrial biotechnology (ibio)-2014、大連市(中国)、2014年4月27日
  7. M. Taki、Cancer detection and cure: antibody drugs and (hybrid) peptides as antibody substitutes、The second conference on interdisciplinary research in traditional medicine and modern medical bioscience、南京市(中国)、2014年4月24日
  8. M. Taki、Position-specific modification of nucleic acids/peptides/proteins toward pharmaceutical systems engineering、南京医科大学学術講演、南京市(中国)、2014年4月23日
  9. 瀧 真清, 創薬システムエンジニアリング:NEXT-A法および10BASEd-T法の開発, 群馬大学 H25年度夏期複合材料研究会, 草津市, 2013年7月21日.
  10. 瀧 真清, NEXT-A反応による蛋白質/ペプチドの迅速標識, ハイペップ研究所 第11回紅葉ワークショップ, 京都市, 2012年12月21日
  11. M. Taki、Introduction of functional amino acids at the N-terminus of peptide/protein by the NEXT-A (N-Terminal EXtension with Transferase and ARS) reaction、コペンハーゲン大学セミナー、コペンハーゲン市(デンマーク)、2011年9月6日
  12. 瀧 真清, NEXT-A反応を用いた蛋白質N末端への機能性非天然アミノ酸導入, 第11回日本蛋白質科学会年会ワークショップ, 大阪、2011年6月7日
  13. M. Taki、Introduction of functional amino acids at the N-terminus of peptide/protein by the NEXT-A (N-Terminal EXtension with Transferase and ARS) reaction、第4回HiPep沖縄国際ワークショップ公開講演会、那覇市、2010年7月9日
  14. M. Taki、An invited lecture-Regiospecific modifications of (bio)macromolecules、ポーランド科学アカデミー、ワルシャワ市、2009年9月4日
  15. 瀧 真清, L/F-transferaseを用いた蛋白質N末端特異的な蛍光および陽電子放射断層撮影(PET)プローブ標識, 大阪大学蛋白質研究所セミナー:蛋白質合成法の最近の進歩と生命科学, 大阪府吹田市, 2008年9月26日
  16. 瀧 真清、Regiospecific modifications of (bio)macromolecules、第40回ペプチド夏の勉強会、小樽市、2007年8月7日
  17. 瀧 真清、松下 治朗、宍戸 昌彦, 4塩基コドン/アンチコドン対を用いた哺乳動物 生細胞内での遺伝暗号の拡張, 第7回日本蛋白質科学会年会, 仙台、2007年5月24日